Le contrôle ultime pré-transfusionnel (CUPT) est le dernier contrôle de sécurité avant l’administration d’un produit sanguin labile (PSL). Réalisé au chevet du patient par l’infirmier(e), il est renouvelé pour chaque unité transfusée et se décompose en deux étapes successives : le contrôle de concordance (tous les PSL) et le test de compatibilité ABO (CGR et concentrés de granulocytes).
Le CUPT vise à prévenir les accidents par incompatibilité ABO, la complication immunologique la plus redoutée en transfusion sanguine.
Cet article détaille les deux étapes du contrôle ultime pré-transfusionnel et l’utilisation des trois cartes test les plus courantes en France : ABTest Card®, Safety Card AB® et la carte SERAFOL®.
La compatibilité sanguine et la sécurité du patient
Le CUPT suit une règle de sécurité immunologique : ne pas apporter au patient un antigène qu’il ne possède pas.1 Si des globules rouges porteurs d’un antigène étranger (A ou B) sont transfusés à un receveur, ses anticorps naturels détruisent les hématies transfusées et provoquent une hémolyse intravasculaire aiguë.2
Une transfusion compatible peut être isogroupe (même groupe sanguin entre donneur et receveur) ou non isogroupe (groupes différents, mais les antigènes du donneur sont tolérés par le receveur). Une incompatibilité se produit lorsque les anticorps du receveur reconnaissent et détruisent les hématies transfusées.3
Le système ABO et ses anticorps réguliers
Le système ABO est la principale barrière immunologique en matière de transfusion sanguine.4 Il repose sur la présence ou l’absence de deux antigènes sur les globules rouges : l’antigène A et l’antigène B. Les individus appartiennent aux groupes A, B, AB ou O, selon la combinaison de ces antigènes sur leurs globules rouges. Cette classification détermine les anticorps réguliers présents dans le plasma.5
Ces anticorps sont dits « réguliers » (ou naturels), car ils sont présents dans le plasma de tout individu, sans exposition préalable à du sang étranger. Ils agissent contre les antigènes A ou B absents de leurs propres globules rouges :
- Un receveur de groupe A possède des anticorps anti-B.
- Un receveur de groupe B des anticorps anti-A.
- Un receveur de groupe O des anticorps anti-A et anti-B.
- Un receveur de groupe AB n’en possède aucun.
En dehors du système ABO, d’autres systèmes de groupes sanguins existent (Rhésus, Kell, Duffy, Kidd).2 Ces systèmes sont associés à la production d’anticorps irréguliers, non naturellement présents dans le plasma. Ils peuvent s’être formés après une transfusion antérieure ou une grossesse.6
Ces anticorps irréguliers ne constituent pas une barrière immunologique systématique, comme dans le système ABO, mais plutôt occasionnelle, qui dépend de l’exposition préalable de l’individu aux antigènes étrangers.6
Le CUPT ne détecte que les incompatibilités du système ABO. Il ne protège pas du risque lié aux anticorps irréguliers, dont la sécurité passe par les examens pré-transfusionnels (RAI, phénotypage). Le dispositif utilisé au lit du patient ne détermine pas le groupe sanguin : il vérifie uniquement que l’on n’apporte pas au receveur un antigène qu’il ne possède pas.1.4
Lors d’une incompatibilité ABO, le mécanisme d’hémolyse se déroule ainsi :
Les deux étapes du contrôle ultime pré-transfusionnel (CUPT)
Le CUPT est structuré en deux étapes successives : le contrôle de concordance (pour tous les PSL) et le test de compatibilité ABO (pour les CGR et les concentrés de granulocytes). Il doit respecter trois conditions de sécurité : 1.4
- Unité de lieu : l’ensemble des contrôles se déroule au chevet du patient.
- Unité de temps : les étapes sont réalisées successivement, juste avant la pose, sans interruption.
- Unité d’action : la même personne réalise les contrôles et pose la transfusion.
Lorsque plusieurs PSL sont prescrits, chaque poche est transfusée individuellement. Le CUPT et la prise des paramètres vitaux sont renouvelés pour chaque nouvelle unité. L’ensemble des vérifications de concordance est repris à chaque pose.
Le contrôle ultime de concordance
Cette première étape est obligatoire pour tous les types de PSL. L’infirmier(e) vérifie l’adéquation entre l’identité du receveur, les documents d’immuno-hématologie et le type de produit délivré.
La vérification détaillée comprend plusieurs éléments : 1.4
- Identification du patient : l’infirmier(e) demande au patient de décliner son identité par questions ouvertes : « Pouvez-vous m’épeler votre nom de naissance, nom d’usage, prénom, et me donner votre date de naissance ? ». Si le patient ne peut pas répondre, la procédure d’identitovigilance de l’établissement permet de relier les documents au patient, y compris en cas d’identité incomplète ou de demande d’anonymat.
- Concordance de l’identité sur les documents : l’infirmier(e) vérifie la concordance de l’identité du patient sur la prescription médicale, la fiche de délivrance, les résultats de phénotypage érythrocytaire ABO-RH-KEL1 (et au-delà si nécessaire), le résultat de RAI et, si présente, l’étiquette complémentaire de compatibilité du CGR.
- Compatibilité du phénotype érythrocytaire : le phénotype érythrocytaire du PSL (inscrit sur son étiquette) doit concorder avec celui de la fiche de délivrance et être compatible avec le phénotypage du patient mentionné sur les résultats d’analyse.
- Vérification des données d’identification du PSL : l’infirmier(e) contrôle la concordance des données du PSL entre l’étiquette et la fiche de délivrance : type de PSL, numéro d’identification, phénotypage, qualifications et transformations.
- Contrôle du PSL et du délai réglementaire : la date de péremption et le respect du délai de 6 heures après réception dans le service sont vérifiés. Pour les produits transformés ou le plasma décongelé, ce délai court depuis la fin de la transformation ou de la décongélation. Les conditions de réception de chaque PSL sont détaillées dans notre guide infirmier sur la transfusion sanguine.
- Conformité du processus transfusionnel spécifique du patient.
Malgré cette vérification systématique, le rapport national d’hémovigilance 2024 constate que les erreurs de destinataires de PSL ne diminuent pas de façon significative en France. La sécurité de l’acte transfusionnel dépend de la rigueur et de la concentration du professionnel lors de chaque contrôle.7
Le contrôle ultime de compatibilité ABO
Cette seconde étape est réalisée exclusivement lors de la transfusion de concentrés de globules rouges (CGR) ou de concentrés de granulocytes. Ce test n’est pas réalisé pour les plaquettes ni pour le plasma.
Avant utilisation, l’infirmier(e) vérifie l’intégrité et la date de péremption du dispositif. La réglementation exige que chaque carte permette de tracer quatre éléments obligatoires : 4
- L’identité du patient.
- L’identité du professionnel qui réalise le contrôle.
- Le numéro d’identification (code-barres) du CGR ou du concentré de granulocytes.
- Les résultats de la compatibilité et la décision transfusionnelle (transfusion : oui/non).
Les plus utilisées en France sont : ABTest Card®, Safety Card AB® ou SERAFOL®.
Les anticorps Anti-A et Anti-B sont pré-déposés et déshydratés sur la carte par le fabricant. L’infirmier(e) réhydrate les zones réactives avec la solution fournie dans le kit, puis dépose une goutte de sang du patient et une goutte de sang prélevée sur la tubulure du CGR. L’interprétation du résultat dépend de la technologie de la carte utilisée.5.8.9
La règle de décision et la lecture visuelle sont détaillées dans la section « Décision transfusionnelle ».
Le test pré-transfusionnel avec l’ABTest Card®
| Remarque : Le prélèvement capillaire et le prélèvement sur la tubulure exposent à un risque d’exposition avec le sang. Avant de manipuler la carte, une friction hydroalcoolique est réalisée, puis des gants à usage unique sont enfilés. Après utilisation, le pique-doigt et le perce-tubulure sont éliminés dans un collecteur OPCT. La technique du prélèvement capillaire est détaillée dans notre article consacré au prélèvement capillaire sanguin. |
L’ABTest Card® (Diagast) est l’un des trois dispositifs de contrôle ultime de compatibilité ABO utilisés en France. Le protocole ci-dessous s’appuie sur la notice d’utilisation du fabricant.8
Vérifications préalables
- Contrôler l’intégrité du sachet aluminium et la date de péremption du kit.
- Vérifier la présence du sachet dessiccateur à l’ouverture.
- Vérifier la couleur des réactifs pré-déposés sur la membrane : Anti-A bleu, Anti-B jaune. Ne pas utiliser le dispositif si ces couleurs ne sont pas conformes.
- Utiliser uniquement la solution WS fournie dans le kit (pas de NaCl 0,9 %).
- Noter l’identité du patient ou coller ses étiquettes d’identification à l’emplacement prévu.
- Coller l’étiquette détachable de la poche portant le numéro d’identification du CGR. Ne jamais retranscrire manuellement ce numéro.
Réalisation du test
- Déposer une grosse goutte de solution WS (flacon fourni) au centre des 4 zones réactives (Anti-A et Anti-B, rangées Patient et CGR). Les zones réactives bleues et jaunes doivent totalement virer au vert.
- Ajouter une deuxième goutte de solution WS si des teintes bleues ou jaunes persistent.
- Prélever le sang du patient à l’aide du pique-doigt fourni.
- Déposer une goutte d’au moins 3 mm au centre de chaque zone réactive « Patient ». Le contact direct du doigt avec les zones réactives est sans risque de contamination croisée.
- Homogénéiser soigneusement la tubulure (ou « boudin » en pratique) du CGR afin qu’il y ait une suspension homogène d’hématies dans toute la tubulure.
- Prélever une goutte de sang sur la tubulure rattachée à la poche (et non dans la poche elle-même) à l’aide du perce-tubulure et la déposer sur chaque zone réactive « CGR ». Éviter l’excès de sang.
→ Si la zone réactive « CGR » a commencé à sécher (délai prolongé lors du prélèvement capillaire), déposer une seconde goutte de solution WS sur les zones CGR avant d’y déposer le sang.
- Cocher « Oui » dans la case « Contrôle Dépôt de sang » sur le support cartonné.
- Attendre l’absorption complète du sang dans chaque zone réactive.
- Remplir totalement chaque puits avec la solution WS et attendre l’absorption complète.
→ Si des résidus de sang persistent, réaliser un second lavage immédiatement après le premier. Une fois le résultat interprété, ne jamais relaver les puits : un lavage tardif détruit les complexes immuns fixés et fausse le contrôle.
Interprétation des résultats
La lecture s’effectue immédiatement après le lavage :
- Zone rouge/rose homogène = résultat positif (+) : l’antigène (A ou B) est présent sur les hématies testées.
- Zone verte à blanche = résultat négatif (0) : l’antigène est absent.
Si le dépôt de sang n’est pas homogène ou si la partie blanche de la membrane (sans réactif) est colorée, le résultat est non interprétable. Recommencer le test avec un nouveau dispositif.
Traçabilité
Détacher l’étiquette autocollante de l’ABTest Card® (identité du patient, identité du soignant, numéro du CGR, résultats, conclusion, date, heure et signature) et la coller dans le dossier transfusionnel du patient.
| Remarque : Les résultats sur la membrane de l’ABTest Card® ne sont stables que pendant 2 heures après la réalisation du test. |
Le test pré-transfusionnel avec la Safety Card AB®
Le processus ci-dessous s’appuie sur la notice d’utilisation du fabricant.5
Vérifications préalables
- Contrôler l’intégrité du sachet, la date de péremption du kit et l’état du film plastique protecteur des zones réactives.
- Ouvrir le sachet et vérifier l’intégrité de la carte.
- Contrôler la couleur des réactifs desséchés : Anti-A bleu turquoise, Anti-B jaune. Ne pas utiliser un dispositif endommagé.
- Renseigner l’en-tête de la carte : coller les étiquettes d’identification du patient et l’étiquette détachable de la poche portant le numéro d’identification du CGR. Ne jamais retranscrire ce numéro manuellement.
Réalisation du test
- Prélever le sang du patient à l’aide du pique-doigt et déposer une grosse goutte sur l’emplacement « Patient ».
- Homogénéiser la tubulure du CGR.
- Insérer la tubulure dans le sécuritube (perce-tubulure) et déposer une grosse goutte de sang sur l’emplacement « CGR ».
- Déposer une goutte de NaCl 0,9 % (berlingot fourni) dans chacune des 4 alvéoles réactives pour réhydrater les réactifs. Ne pas mettre le berlingot en contact avec le réactif.
- Prélever le sang du patient à l’aide d’une spatule, depuis sa zone de dépôt et le transférer dans l’alvéole Anti-A :
- Mélanger sur toute la surface.
- Jeter la spatule et recommencer avec une nouvelle spatule pour l’alvéole Anti-B.
- Procéder de la même manière avec le sang de la poche du CGR et deux nouvelles spatules.
- Faire chalouper la carte (mouvement circulaire lent) pendant 30 secondes.
- Poser la carte à plat pendant 30 secondes, puis lire les résultats la faisant à nouveau chalouper.
| Remarque : Si une réaction apparaît négative à la première lecture, poursuivre la surveillance jusqu’à 3 minutes au total avant de conclure. Certains antigènes de groupe faible nécessitent ce délai pour agglutiner. |
Interprétation des résultats
La lecture utilise la technologie d’hémagglutination :
- Agglutination visible (amas d’hématies sur fond clair) = réaction positive. Noter « X » sur la carte.
- Absence d’agglutination (hématies en suspension homogène) = réaction négative. Noter « O » sur la carte.
Traçabilité
Compléter les informations de traçabilité directement sur la carte (identité du patient, identité du soignant, numéro du CGR, résultats, conclusion, date, heure et signature) et apposer l’autocollant plastifié transparent fourni sur les zones réactives pour conserver les résultats.
Le test pré-transfusionnel avec la Carte SERAFOL®
La carte SERAFOL® (Bio-Rad) se distingue par sa conception en deux parties détachables : une partie supérieure pour les résultats du test et une partie inférieure pour la traçabilité. Le protocole ci-dessous s’appuie sur la notice d’utilisation du fabricant. 9
Vérifications préalables
- Contrôler l’intégrité du conditionnement et la date de péremption du kit.
- Vérifier que les pastilles réactives Anti-A et Anti-B sont intactes et non altérées.
- Noter l’identité du patient ou coller ses étiquettes d’identification à l’emplacement prévu.
- Coller l’étiquette détachable de la poche portant le numéro d’identification du CGR. Ne jamais retranscrire manuellement ce numéro.
Réalisation du test
- Ouvrir l’emballage sous vide immédiatement avant le test.
- Replier le volet supérieur pour faire apparaître les pastilles réactives Anti-A et Anti-B.
- Prélever le sang du patient à l’aide du pique-doigt :
- Déposer une goutte dans la zone Anti-A et une goutte dans la zone Anti-B de la rangée « Receveur ».
- Ajouter une goutte de NaCl 0,9 % dans chaque zone.
- Homogénéiser la tubulure du CGR.
- Prélever une goutte de sang sur la tubulure reliée à la poche à l’aide du perce-tubulure :
- Déposer une goutte dans la zone Anti-A et une goutte dans la zone Anti-B de la rangée « Donneur ».
- Ajouter une goutte de NaCl 0,9 % dans chaque zone.
- Mélanger chaque zone pendant environ 30 secondes avec un bâtonnet, jusqu’à la dissolution complète du réactif.
- Utiliser un bâtonnet différent pour chaque zone.
- Faire chalouper la carte (mouvement circulaire lent) pendant 30 à 60 secondes.
- Ne pas laisser le sang sécher.
- Observer sans délai les zones réactives et noter le résultat sur la carte.
| Remarque : La notice d’utilisation décrit deux méthodes de réalisation dont la méthode décrite ci-dessus (sang d’abord, puis NaCl) est la méthode principale. Une méthode alternative (NaCl d’abord dans les zones réactives, puis transfert du sang avec un bâtonnet) est également validée par le fabricant. L’infirmier(e) suit le protocole en vigueur dans son établissement. Certaines versions de la carte SERAFOL® comportent une zone « sang » supplémentaire sur chaque rangée (receveur et donneur). Cette zone sert d’autocontrôle : y déposer une goutte de sang et une goutte de NaCl 0,9 %, puis mélanger. Le résultat doit toujours être négatif (sang homogène, sans agglutination). Si une agglutination apparaît dans cette zone, le test est ininterprétable et l’infirmier(e) contacte le médecin responsable. |
Interprétation des résultats
La lecture utilise également la technologie d’hémagglutination :
- Sang homogène rouge, sans amas = réaction négative : l’antigène (A ou B) est absent des hématies testées.
- Amas d’hématies visibles (agglutinats) = réaction positive : l’antigène est présent.
Traçabilité
La carte SERAFOL® est conçue en deux parties détachables. Après le test, compléter les informations de traçabilité sur la partie inférieure (identité du patient, identité du soignant, numéro du CGR, résultats, conclusion, date, heure et signature).4
Décision transfusionnelle et conservation du matériel
Quelle que soit la carte utilisée (ABTest Card®, Safety Card AB® ou SERAFOL®), la règle de décision et les conditions de conservation du matériel sont identiques.
Décision : « je transfuse ou je ne transfuse pas »
Appliquer la règle de décision imprimée sur le dispositif : pour un même réactif (même couleur), toute réaction positive avec le CGR et négative avec le patient interdit la transfusion.4
Trois situations se présentent : 5.8.9
- Compatible isogroupe : le patient et le CGR réagissent aux mêmes réactifs. Anti-A et Anti-B donnent le même résultat pour les deux (exemple : patient A et CGR A, tous deux positifs en Anti-A et négatifs en Anti-B). Cocher « Transfusion OUI ».
- Compatible non isogroupe : les groupes sanguins sont différents, mais le CGR ne porte aucun antigène absent chez le patient (exemple : CGR A, positif en Anti-A, transfusé à un patient AB, positif en Anti-A et Anti-B). Le CGR est positif en Anti-A, le patient aussi : la transfusion est autorisée. Cocher « Transfusion OUI ».
- Incompatible : le CGR réagit positivement à un réactif auquel le patient ne réagit pas. Le CGR apporte un antigène que le patient ne possède pas (exemple : CGR A, positif en Anti-A, transfusé à un patient O, négatif en Anti-A). Cocher « Transfusion NON ».
En cas de doute, de discordance ou de difficulté d’interprétation, ne pas poser la transfusion et contacter le médecin responsable. Celui-ci sollicite si nécessaire le médecin ou le pharmacien habilité au conseil transfusionnel.
La lecture visuelle d’un résultat positif ou négatif diffère selon la technologie utilisée :
| Dispositif | Réaction positive (+) | Réaction négative (0) |
| Safety Card AB® et SERAFOL® | Agglutinats visibles (amas sur fond clair). | Sang homogène, sans amas. |
| ABTest Card® | Spot rouge/rose homogène. | Zone verte à blanche. |
Un(e) soignant(e) habitué(e) à l’hémagglutination (Safety Card®, SERAFOL®) peut confondre le spot rouge homogène de l’ABTest Card® (positif) avec une absence d’agglutination (négatif). L’infirmier(e) adapte sa lecture au dispositif utilisé dans son service.
Conservation du matériel après le test
La carte de contrôle ultime (ou sa photo) est conservée avec la poche et la tubulure pendant au minimum 4 heures dans le service, conformément à la réglementation. Le dispositif ou sa photo est également archivé dans le dossier transfusionnel du patient.4
Pour l’ABTest Card®, les résultats sur la membrane ne sont stables que pendant 2 heures : l’étiquette de traçabilité doit être complétée et collée dans le dossier transfusionnel dès la fin du test.8
Une fois le CUPT validé et la décision de transfuser prise, l’infirmier(e) procède au branchement et à la surveillance de la transfusion selon le protocole décrit dans le guide infirmier sur la transfusion sanguine.
Remerciements
Nous tenons à exprimer notre profonde gratitude au Docteur Jean-Yves Py, secrétaire général de la Société Francophone de Transfusion Sanguine (SFTS), pour sa relecture attentive de cet article et sa précieuse contribution.
Nous remercions également Isabelle BATAILLE (cadre de santé et formatrice en IFSI), Aude PALLIER (formatrice et référente en santé), Marielle LABORDE (formatrice en santé), Badia JABRANE (directrice pédagogique), Carole PALLARES (infirmière hygiéniste) et Sophie SANGUINI (infirmière hygiéniste) pour leur relecture et leur contribution à la qualité pédagogique des contenus.
Chez Réussis ton IFSI, nous nous engageons à proposer des contenus fiables et conformes aux recommandations en vigueur. En complément de l’expertise de notre équipe, nous sollicitons des professionnel(le)s extérieur(e)s qualifié(e)s qui enrichissent nos articles de leur regard clinique.
Sources
- SFTS (2022). L’acte transfusionnel.
- ANSM (2015). L’incompatibilité immunologique érythrocytaire (IIE).
- HAS (2012). Transfusion de plasma thérapeutique : produits, indications. Haute Autorité de Santé
- Ministère de la Santé, des familles, de l’autonomie et des personnes handicapées (2026). Instruction n° DGS/PP4/2026/97 du 19 juin 2026 relative à la réalisation de l’acte transfusionnel
- DIAGAST (2019). SAFETY CARD AB.
- ANSM (2015). L’Allo-Immunisation Isolée (AII).
- ANSM (2025). 22e rapport national d’hémovigilance.
- DIAGAST (2019). ABTest Card®.
- Serafol (2019). AB0/Serafol® AB0+D : informations concernant l’utilisation pour le personnel spécialisé.
